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徕卡显微镜，FLCS - 荧光相关光谱进展
在单分子水平的表征物质已成为的标准剧目科研院所的一部分。最常用的方法之一，是荧光相关光谱（FCS），它可以用来检查的动态性和在溶液中的荧光分子浓度。本文介绍了一种测量技术，结合了经典的FCS测量与时间相关的单光子计数，以获得更精确和可靠的结果。FCS是经常被用来研究的分子在溶液中的动态过程。然而，实验因素严重影响的分析，如FCS数据记录。典型的因素包括工件的测量系统中，杂散光的荧光基团的三线态
2020-09-04
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奥林巴斯显微镜：荧光显微镜解剖式讲解
到其他模式基于宏观上的试样的功能，如相位梯度，光的吸收，和双折射的光学显微镜相比，能够仅仅基于荧光发射性能的一个单一的分子种类的分布成像的荧光显微镜。因此，用荧光显微镜，与特定的荧光基团标记的胞内组分的精确位置进行监测，以及其相关联的扩散系数，传输特性，以及与其它生物分子相互作用。此外，在荧光显着的反应，以本地化的环境变量可以调查了pH值，粘度，折射率，离子浓度，膜电位，和在活细胞和组织中的极性溶
2020-09-04
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尼康显微镜：三色成像激光扫描共聚焦显微镜的方法及应用
激光扫描共聚焦显微镜（LSCM）通常用于产生数字图像的单，双，三荧光标记的样本。使用红色，绿色和蓝色（RGB）颜色的信息用于显示多达三个标记细胞的荧光探针，任何共定位观察到不同的加色的彩色图像时，合并成一个分布单三色图像。在本节中，我们提出了生产三色共聚焦图像，采用了时下流行的图像处理程序，Adobe公司的Photoshop先前公布的方法的简化版本。此外，多个应用程序的显示共聚焦图像的三色的合并协
2020-09-04
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奥林巴斯显微镜：荧光和相衬的组合
光漂白的影响减到最小，荧光显微镜可以不破坏与其他技术相结合的荧光染料，如微分干涉相差（DIC），霍夫曼调制对比度（HMC），传送暗场照明，相位相反的。我们的想法是找到一个感兴趣的具体领域使用非破坏性的对比度增强技术，然后在一个标本，没有搬迁的标本，在显微镜切换荧光模式。这种类型的一个典型的实验的结果示于图1。图1（a）示出了使用相位对比光学成像的3T3成纤维细胞的单层组织培养。细胞行成立由美国国立
2020-09-04
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![奥林巴斯显微镜：什么是扫描近场光学显微镜（SNOM）]()
奥林巴斯显微镜：什么是扫描近场光学显微镜（SNOM）
在衍射极限的光学显微镜的一个基本原则要求的空间分辨率的图像的入射光的波长，并通过聚光镜和物镜系统的数值孔径是有限的。发展近场扫描光学显微镜（NSOM），也经常被称为扫描近场光学显微镜（SNOM），一直需要一种成像技术，实现空间的同时，保留了光学显微镜的方法所带来的各种对比机制驱动超越了经典的光学衍射极限的分辨率。扫描近场光学显微镜分类之间更广泛的器乐组统称为扫描探针显微镜（SPMS）。所有的SPM
2020-09-04
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![徕卡显微镜：多波长在荧光显微镜落射照明]()
徕卡显微镜：多波长在荧光显微镜落射照明
荧光是一个过程，其中已吸收的光（光子）后的物质emitts的辐射的波长（颜色），其中长于吸收光，这个排放停止后立即停止激发。这种现象是荧光显微镜及其应用的基本元素。除此之外，“古典”在光学显微镜下的荧光激发，有可能两个或多个光子具有较长wavengths比发射的激发激光共聚焦扫描显微镜通过现代技术来获得相同的发光效果。 荧光作为autofluorescenc的生物和/或无机结构或所谓的次级荧
2020-09-04
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![尼康显微镜：活细胞显微漂移校正焦点]()
尼康显微镜：活细胞显微漂移校正焦点
直到20世纪80年代末，大多数生命科学的研究生物的结构复杂的细节，捕捉各种使用固定和染色标本（实际上，非生物）的细胞学特征的单一快照。然而，在过去的几十年中，在生物科学和医学的研究已经在很大程度上转移了重点调查浩大的时间尺度上，从几毫秒到几小时不等的生命系统的分子，细胞和整个生物体水平上发生的动态过程。过渡到活细胞成像的司机已经先进的显微仪器和更敏感的数码相机的发展，以及新的合成和基因编码的荧光基
2020-09-04
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![奥林巴斯显微镜：荧光和DIC的组合]()
奥林巴斯显微镜：荧光和DIC的组合
光漂白的影响减到最小，荧光显微镜可以不破坏与其他技术相结合的荧光染料，如微分干涉相差（DIC），霍夫曼调制对比度（HMC），传送暗场照明，相位相反的。我们的想法是找到一个感兴趣的具体领域使用非破坏性的对比度增强技术，然后在一个标本，没有搬迁的标本，在显微镜切换荧光模式。这种类型的一个典型的实验的结果示于图1。图1（a）示出的大鼠视网膜视神经神经节组织薄截面使用微分干涉对比成像。显微照片，图1（b）
2020-09-04
