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奥林巴斯显微镜：荧光显微镜解剖式讲解
到其他模式基于宏观上的试样的功能，如相位梯度，光的吸收，和双折射的光学显微镜相比，能够仅仅基于荧光发射性能的一个单一的分子种类的分布成像的荧光显微镜。因此，用荧光显微镜，与特定的荧光基团标记的胞内组分的精确位置进行监测，以及其相关联的扩散系数，传输特性，以及与其它生物分子相互作用。此外，在荧光显着的反应，以本地化的环境变量可以调查了pH值，粘度，折射率，离子浓度，膜电位，和在活细胞和组织中的极性溶
2020-09-04
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奥林巴斯显微镜：荧光和相衬的组合
光漂白的影响减到最小，荧光显微镜可以不破坏与其他技术相结合的荧光染料，如微分干涉相差（DIC），霍夫曼调制对比度（HMC），传送暗场照明，相位相反的。我们的想法是找到一个感兴趣的具体领域使用非破坏性的对比度增强技术，然后在一个标本，没有搬迁的标本，在显微镜切换荧光模式。这种类型的一个典型的实验的结果示于图1。图1（a）示出了使用相位对比光学成像的3T3成纤维细胞的单层组织培养。细胞行成立由美国国立
2020-09-04
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徕卡显微镜：多波长在荧光显微镜落射照明
荧光是一个过程，其中已吸收的光（光子）后的物质emitts的辐射的波长（颜色），其中长于吸收光，这个排放停止后立即停止激发。这种现象是荧光显微镜及其应用的基本元素。除此之外，“古典”在光学显微镜下的荧光激发，有可能两个或多个光子具有较长wavengths比发射的激发激光共聚焦扫描显微镜通过现代技术来获得相同的发光效果。 荧光作为autofluorescenc的生物和/或无机结构或所谓的次级荧
2020-09-04
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徕卡显微镜：荧光简介
荧光是由乔治·加布里埃尔·斯托克斯在1852年首次被发现。他指出，萤石开始发光后，用紫外光照射。荧光是一种形式的，它描述了由辐射产生的光子的材料被光照射后的光致发光。所发射的光具有比激发光的波长较长的。这种效应被称为斯托克斯位移（Stokes shift）。 作为一种工具，荧光显微镜被广泛用于荧光显微镜观察特定的分子的分布的一个重要工具。大多数细胞中的分子不发出荧光。因此，他们被称为荧光染料的荧
2020-09-04
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![尼康显微镜：EPI-荧光照明光路]()
尼康显微镜：EPI-荧光照明光路
直到最近，荧光照明是一个选项仅适用于配备专门的高数值孔径物镜的研究级复合显微镜。这一技术在立体显微镜的需要不断升级与引进的编码基因和生物特异性荧光蛋白GFP（绿色荧光蛋白）等。体视显微镜的应用GFP观察现在是如此普遍，立体声荧光照明，更经常被称为GFP照明，即使他们可以利用许多其他应用在生命科学和电子制造业。大幼虫，线虫，斑马鱼，卵母细胞和成熟的昆虫标本，如可以方便地选择和操作时，他们GFP标记的
2020-09-04
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![奥林巴斯显微镜：什么是荧光？]()
奥林巴斯显微镜：什么是荧光？
当试样，活的或非活的，有机或无机，吸收和后来重新焕发灯，这个过程描述为光致发光。如果光的发射，激发能量（光）后，便不再持续几秒钟，该现象被称为磷光。荧光，在另一方面，描述了光发射的激发光的吸收仅在继续。激发光的吸收和再辐射光荧光发射的时间间隔是异常持续时间短，一般不超过百万分之一秒。荧光的现象是19世纪所产生。英国科学家Sir George G. Stokes首先观察矿物萤石具有荧光，用紫外光照射
2020-09-04
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尼康显微镜，荧光共振能量转移（FRET）显微镜与荧光蛋白的基本原理
在活细胞中，动态的蛋白质之间的相互作用被认为是发挥了关键作用，调节许多信号转导通路，以及广泛的其他关键流程。 在过去，经典的生物化学方法，阐明了这种相互作用的机制是司空见惯，但是弱的或短暂的相互作用，可能会发生细胞内的天然环境是这些技术通常是透明的。 例如，合作一直怀疑蛋白本地化合作伙伴使用固定细胞免疫荧光显微镜检查相互作用在原地 ，并已提交了大量的文献报道基于这种技术的常用方法。 然而，由于在
2020-09-04
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尼康显微镜的荧光原位杂交技术
近四分之一个世纪以来已通过引入原位杂交的方法检测和研究染色体和细胞的DNA序列在文献中出现的第一个研究文章。 然而，在过去的15年里，发生了一场革命，光镜下通过荧光技术的发展，允许前所未有的轻松，精密，准确定位，识别和生物医学样品的基因构成数据记录。通过同时使用多个荧光色原位杂交的力量得以极大地延长。 多色荧光原位杂交（FISH），在其最简单的形式中，可以用于识别尽可能多的杂交中使用的不同的荧光
2020-09-04
